1. 引言

鱼类胚胎发育是指鱼类发育成熟的精子、卵子在水体中或者在体内受精，形成受精卵，逐步发育到仔鱼出膜初孵或者卵胎生鱼类的仔鱼初产的发育过程，是鱼类早期发育不可或缺的环节。

尖吻鲈(Lates calcarifer)俗称盲鰽、金目鲈、红目鲈等，属脊索动物门(Chordata)、辐鳍鱼纲(Actinopterygii)、鲈形目(Perciformes)、鲈形亚目(Percoidei)、尖吻鲈科(Latidae)、尖吻鲈属(Lates)。尖吻鲈为热带与亚热带肉食性、广盐性鱼类，主要分布地区有印度西太平洋区，包括波斯湾、印度、斯里兰卡、缅甸、印度尼西亚、日本、菲律宾、澳洲北部以及中国南海等海域。具有口感好、生长速度快、饵料系数低等特点，既可深水网箱养殖也可内陆池塘养殖。

尖吻鲈亲鱼通常在网箱中或室内海水养殖池内进行培育。成年亲鱼不会出现明显的性腺发育表观特征，在海水环境中可自然产卵，也可通过人工干预的方式进行人工催产。国内关于尖吻鲈的研究开始的较早，但是后续研究较少 [1] [2]。近期关于尖吻鲈的研究主要集中在环境因子、骨骼发育、异速生长、营养与提取物、疾病防治、工厂化育苗等方面 [3] - [14]。对于胚胎发育的研究未见报道。

尖吻鲈胚胎发育的研究，可以清楚地了解该时期各个发育阶段的发育特征及各组织器官的发育时期，掌握其发育规律，描述其早期生活史的发育特征，为人工繁育技术和养殖技术提供重要的理论指导及科学依据。本研究结果在于积累重要海水养殖鱼类尖吻鲈的基础发育生物学资料，为尖吻鲈的研究提供基础。

2. 材料与方法

2.1. 实验材料

尖吻鲈亲鱼由中国水产科学研究院南海水产研究所热带水产研究开发中心自行养殖培育。尖吻鲈亲鱼使用丁香油水门汀麻醉至刚好失去行动能力(腹部向上，静止不动)。催熟剂为促黄体激素释放激素类似物(LRH-A3) (宁波三生生物科技有限公司)和注射用绒促性素I (宁波三生生物科技有限公司)，符合NY 5071的标准；将两种催熟剂按照4:1的比例溶解在微量100%乙醇中制备注射剂，然后用无菌盐水将其稀释至1 mL，并将该溶液装入连接有25号针头的注射器中；雌雄性亲鱼均通过背部肌肉注射，注射点为：距离第一和第二背鳍射线的中点大约3 cm；注射点的鱼鳞无需去除，针头挑起鱼鳞、穿过鳞片底部的柔软区域；注射完毕将亲鱼放到产卵池中；雌鱼、雄鱼LRH-A3的适用浓度分别为20~80 µg/kg和40 µg/kg。将注射后的亲鱼放入产卵池中(水温29.0 ± 1.0℃，盐度33 ± 0.8‰ (Mean ± SD)，pH 7.7 ± 0.2，溶氧7.5 ± 0.7，白天光照强度1500 LX，夜晚黑暗)，等待产卵。一般在注射后的第二个晚上至次日凌晨(11:00~次日1:00)产卵完成。本次产卵时间为注射后的第二个晚上(11:00)。

实时关注亲鱼动态，待亲鱼开始甩尾产卵后记录产卵时间(受精后0 min)。开始使用解剖镜观察并拍照记录发育状况。至产卵后的次日凌晨6:00将受精卵从产卵池收好放入孵化桶中，(水温29.0 ± 1.0℃，盐度33 ± 0.8‰ (Mean ± SD)，pH 7.7 ± 0.2，溶氧7.5 ± 0.7)水环境基本一致，气石气量调大至尖吻鲈受精卵刚好在水中翻滚。期间每5分钟取样一次，显微观察并拍照。受精后的15 h将气石气泡调小准备迎接孵化(刚孵化后的鱼苗比较弱，在保证水体溶氧的前提下尽量减少水体的扰动)。

自尖吻鲈仔鱼孵化后2天时，将其从孵化器中分别转移到若干容积为7 m³的育苗池中，保证池内鱼苗密度为20~30尾∙L⁻¹自此进入了仔、稚鱼饲养阶段。过滤水(砂滤后的海水再次经过5 µm孔径纱网进行过滤)流入水泥池底部，育苗池中部立1根站管连接排水管溢水排水，溢水管用300 µm孔径纱网拦截幼苗，防止逃逸。通过调节入水管阀门，实现日换水量为苗池总容量的1.5倍。每日定时清理排水口过滤网，保证出水口水流通畅。光照强度为300~3000 Lx。盐度33 ± 0.8‰ (Mean ± SD)，水温控制29.0 ± 1.0℃，pH控制在7.7 ± 0.2，溶氧控制在7.5 ± 0.7。为保证充足溶氧，每池放置12个气石，同时为减小气泡破裂力对幼苗的伤害，气量调小，保证溶氧。

2.2. 胚胎发育观察方法

取受精卵在解剖镜下观察其形态变化，并使用ToupCam体视显微镜进行连续拍照。为达到最佳的拍摄效果，在发育前期每隔5 min换取新鲜的尖吻鲈受精卵进行观察并拍照，至囊胚阶段后每10 min换取新鲜的受精卵并进行观察并拍照，器官形成后每15 min换取新鲜的受精卵并进行观察并拍照记录。

3. 结果与分析

3.1. 受精卵特征

尖吻鲈鱼受精卵为透明球形，直径为0.765 ± 0.032 mm的非粘性卵。卵表面具有类似鳞片的花纹，中心是一个大的透明的卵黄囊，直径约为0.18 mm的微油滴嵌入其中。雌鱼产卵时快速游动并甩尾，雄鱼追赶雌鱼，排精并甩尾，使其在水中进行充分受精。尖吻鲈受精卵属浮性卵，无充气状态下，受精后漂浮于水面或悬浮于海水水体中。未受精或发育不良的卵则沉于水底。

3.2. 尖吻鲈胚胎发育特征描述

尖吻鲈受精卵自尖吻鲈亲鱼交配动作停止后开始定时采集并记录时间，将受精卵放置于显微镜下进

行胚胎发育观察并拍照记录。根据已采集的照片和特征描述，将尖吻鲈胚胎发育全过程进行分阶段分期处理。本研究将尖吻鲈受精卵整个发育过程可分为8个阶段。受精卵在平均温度为29℃的水温条件下，16 h内孵化出膜，82 h鳔形成。表1将尖吻鲈胚胎发育的各个阶段进行了特征描述如下：

受精卵阶段处于刚受精阶段的卵，卵表面有类似鳞片状花纹，细胞质分布均匀，即1细胞期，受精卵中间有一球形油脂，该阶段持续25~30 min。

卵裂阶段受精后30 min，尖吻鲈受精卵进行第一次分裂。在与油球相对的另一端(动物极)发生第一次分裂，胚盘逐渐由外向内缢裂，形成明显卵裂沟，将胚盘分裂成两个大小相等，形状对称的近半球形的卵裂球，两个卵裂球总体构成一个椭圆，进入2细胞期(图1(b))；受精后40 min，开始第二次卵裂，卵

裂沟与第一次卵裂沟相垂直(如不垂直则为畸形卵，不能孵化)，逐渐形成4个大小形态均相同的卵裂球，总体呈四角圆润的“㗊”形，进入4细胞期(图1(c))；受精后55 min，尖吻鲈受精卵第三次卵裂开始，四个卵裂球上均出现卵裂沟，且均与第一次卵裂沟平行，将胚胎平均分成八个大小相近形状略有差异的卵裂球，整齐的排成两行，呈四角圆润的长方形，中间四个卵裂球形状相近，两端四个卵裂球形状相近，进入8细胞期(图1(d))；受精后1 h 5 min开始第四次分裂，形成4行排列，每排4个，中间4个形状相近但与油球重叠度较高不易观察，进入16细胞期(图1(e))；1 h 25 min开始第五次卵裂，胎盘由“方形”向“圆形”靠近，卵裂球变的更小，进入32细胞期(图1(f))。受精后1 h 35 min进入细胞期，尖吻鲈受精卵桑葚胚早期卵裂球变小，大小不一，边缘大中间小，且边缘胚胎细胞较清晰(图1(g))；受精后1 h 55 min进入桑葚胚晚期，细胞变得更小，边缘细胞分裂增多，胚盘接近圆形(图1(h))。

受精后2 h 40 min，进入囊胚阶段，囊胚早期胚盘细胞很小，半圆形囊胚层形成，胚盘开始向一侧开始移动(图1(i))；受精后3 h，进入囊胚中期，细胞界限逐渐不清晰，细胞更小胚盘细胞向一边移动更明显(图1(j))；受精后3 h 30 min，进入囊胚晚期，胚盘在卵黄囊表面扩展，外包开始(图1(k))；4 h 30 min 进入原肠胚阶段，囊胚层细胞逐渐增多,细胞层扩展并逐渐向植物极方向包裹, 原肠胚开始(图1(l))；5 h，进入原肠胚中期，胚层细胞继续扩展，向右上包裹，覆盖卵黄囊的1/2，形成胚环，胚盾增厚(图1(m))；5 h 30 min，原肠胚晚期，胚层细胞覆盖卵黄囊2/3，胚盾变窄(图1(n))；6 h，囊胚层细胞扩展至卵黄囊右上，神经胚阶段开始，胚孔接近闭合，进入胚孔闭合前期(图1(o))；6 h 30 min，胚孔闭合期，胚孔闭合(图1(p))。

7 h，原基出现，胚体形成，柱状胚体一端膨大发育为头部原基(图2(a))；7 h 15 min，器官形成阶段开始，头部两侧隆起眼原基，进入眼基形成期(图2(b))；7 h 15 min，尾牙期，柱状胚体一端发育为铲状(图2(b))；7 h 30 min，眼囊形成期，眼囊膨胀形成(图2(c))；10 h 40 min，心脏出现期，心脏发育成长管状结构，出现在头部末端下方(图2(d))；12 h 30 min，晶状体形成期，晶体形成(图2(e))；12 h 30 min，心跳期，心脏开始有节律地跳动(图2(f))；15 h 50 min，出膜前期，血液循环明显，身体在鱼卵中成“C”

形，卵壳与卵黄之间空隙较大(图3(a)，图3(b))；15 h 50 min，出膜期，头部略弯曲，油球位于头部前方，身体有色素斑点，卵黄囊为椭圆形(图4)，自孵化后至尾部骨骼开始发育为仔鱼期0~20 DPH，其中0~3 DPH为前仔鱼期(图5、图6)期特征为：1. 卵黄尚未吸收完毕；2. 主要依靠卵黄营养；3. 前期口未开，肠道不同，后期口张开，肠道开通；4. 眼睛逐渐着色，视力提升；5. 后期鳔开始充气。4~20 DPH为后仔鱼期(图7)，此阶段特点为卵黄囊吸收完毕，肠道开通，可以开口摄食，此阶段鳍条快读发育，增加运动能力。此阶段是主动摄食的开始阶段。

稚鱼期尖吻鲈的身体结构快速发育(图8)。自鳍条发育基本完成，至鳞片发育完成，为尖吻鲈提供足够的保护为止，通常是指孵化后一个月以内的鱼体(存在特例)。此阶段尖吻鲈体表有色素沉积构成花纹，但无色素沉积的部位仍然透明，此阶段生长速度加快可以尝试进行饲料的驯化。

4. 讨论

目前，鱼类胚胎发育的研究较多，关于胚胎发育所经历的阶段大致相同，但是不同的鱼种发育胚胎发育时长和阶段有所差异。如：小丑鱼(Amphiprioninae)、云南光唇鱼(Acrossocheilus yunanensis)、美洲鲥 (Alosa sapidissima)等 [15] [16] [17] 胚胎发育最主要经历8个阶段(受精卵阶段、胚盘阶段、卵裂阶段、囊胚阶段、原肠胚阶段、神经胚阶段、器官形成阶段、孵化阶段)；而锦鲤(Cyprinus carp Koi) [18] [19] 、棘头梅童鱼(Collichthys lucidus) [20] 、金钱鱼(Scatophagus argus) [21] 、翘嘴鲌(Culter alburnus) [22] 等可能由于鱼种不同受精卵胚胎经历的发育时间不同，因此分为7个阶段，没有描述胚盘期，可能是因为胚盘期时间较短一闪而逝或不易观察而没有详细描述；而云南盘鮈(Discogobio yunnanensis) [23] 、台湾泥鳅 [24] 等描述了6个发育阶段，没有描述胚盘期和孵化期的发育特征；斑马鱼(Danio rerio) [25] 描述了6个发育阶段，且没有神经胚期和器官形成期，描述了体节期和眼囊期等。因此鱼类胚胎发育所经历过程大致相同，但细节描述有所差异。同时据统计胚胎发育时间在粘性卵与非粘性卵之间有较大的差别：粘性卵一般胚胎发育时间较长，非粘性卵胚胎发育时间较短，但不能笼统的以淡水鱼和海水鱼划分 [17] [25] - [33]。有研究表明同属不同种类的鱼类胚胎发育时间有可能会有较大的差别，张薇 [34] 发现，同属的鱼类-双锯鱼属(Amphiprion)-不同种类双锯鱼产卵时间相差不大，产卵间隔规律性较强，但胚胎发育时间有较大差别。

有研究表明环境因子对鱼类胚胎的发育也有较大的影响，例如：水温、盐度、溶解氧等。有研究表明水温对大西洋鲭鱼(Scomber scombrus) [35] 、绯海鲷(Pagellus erythrinus) [36] 、蓝点马鲛鱼(Scomberomorus niphonius) [33] 等，倒刺鲃(Spinibarbus denticulatus) [37] 、宝石鲈(Scortum barcoo) [38] 、黑莓鲈(Pomoxis nigromaculatus) [39] 、日本黄姑鱼(Nibea japonica) [40] 、白斑狗鱼(Esox lucius) [41] 等的胚胎发育有较大的影响。少数鱼类即可以在海水中产卵又可以在淡水中产卵，如青鳉鱼 [42] [43] [44]，由于海水与淡水水环境差异较大(如：盐度、金属离子浓度、水体密度、pH、氨氮、亚盐和溶解氧等) [45] [46]，青鳉鱼在这两种环境中的胚胎发育略有差异。

尖吻鲈为广盐性鱼类，因其受精卵只能在海水中发育，所以只有海水尖吻鲈胚胎发育模式，与青鳉鱼不同。本文对室内人工繁育的尖吻鲈的胚胎发育过程及胚后发育进行了观察及拍照并对发育阶段进行描述，过程中环境因子稳定。尖吻鲈胚胎发育分为七个阶段(即经过受精卵阶段、卵裂阶段、囊胚阶段、原肠胚阶段、神经胚阶段、器官分化形成阶段及出膜阶段)，是典型的硬骨鱼类胚胎发育的模式，与锦鲤 [18] [19] 、棘头梅童鱼 [20] 、金钱鱼 [21] 、翘嘴鲌 [22] 等相似，不同的是尾牙期和眼囊形成期几乎同时进行。受精后30min内，完成受精卵的激活，并开始分裂。尖吻鲈胚胎发育时长较短，发育时长仅为15 h 50 min，短于大部分鱼类，是典型的浮性卵。且其出膜后仍无法摄食，仅有微弱的游泳能力，需借助自身营养继续发育，至59 h左右才能获取外源营养。直至82 h鳔形成才能自由控制在水中的位置，不再局限于漂浮于水体上层。

本文在对其发育过程各个时期特点进行描述后，可为尖吻鲈受精卵对环境因子的响应变化做参考，将利于进行海洋因子变化对器官发育及发育进程影响的研究。并且尖吻鲈器官发育，主要是心脏、脑、眼、肠道、鳔等也已进行了描述。尖吻鲈胚胎发育对环境因子的响应及受精卵处理技术的开发有待进一步研究。

5. 结论

本文对尖吻鲈发育进行了观察和描述，根据发育特征将整个发育过程分可为8个阶段(包括胚胎发育7个阶段和胚后发育阶段)。根据各阶段内发育细节变化，又把尖吻鲈胚胎整个发育阶段划分为32个时期。本研究发现尖吻鲈与硬骨鱼类发育特征基本相同，不同的是尾牙期和眼囊形成期几乎同时进行，每个发育阶段所需发育时长不同，本研究为提高和优化海水鱼类人工繁育和养殖技术提供重要的理论依据。

基金项目

广西创新驱动发展专项资金项目(桂科AA18242031)；中国水产科学研究院南海水产研究所中央级公益性科研院所基本科研业务费专项资金资助(2018ZD01)；中国水产科学研究院基本科研业务费资助项目(2020XT03, 2020XT0301)；中国水产科学研究院科技创新团队项目(2020TD55)；海南省重点研发计划(ZDYF2018096)；现代农业产业技术体系专项资金资助(CARS-47)；农业农村部财政专项(南海水产研究所南海渔业中心)。

NOTES

^*通讯作者。

参考文献