1. 引言

研究背景与意义

伴随着年龄的增长，衰老逐渐成为生命进程中不可忽略的一部分，作为复杂且多方面的过程，衰老涉及多个组织和细胞水平的改变，其最终结果是导致功能下降和死亡率增加。2023年Carlos López-Otín及其团队首次提出了衰老的十二个标志：基因组不稳定、端粒损耗、表观遗传改变、蛋白质稳态丧失、大自噬失能、营养感应失调、线粒体功能障碍、细胞衰老、干细胞耗竭、细胞间通讯改变、慢性炎症和生态失调[1]。这些衰老中的生物过程有助于我们理解衰老的机制，同时也对后续开发有效延缓衰老以及治疗与年龄相关疾病的策略至关重要。其实从古代时期我们的祖先就发现可以通过饮食、生活方式或药物等方式来实现长寿或者是延长健康寿命，这也提示衰老过程可通过人为手段干预，现代也有假说认为针对衰老过程本身调节，可以同时预防、延缓、降低许多与年龄相关疾病的严重程度[2]。然而，尽管通过动物模型得以方便我们研究干预措施对衰老过程的影响，但受限于伦理道德、生物学差异或者经济等限制，这些干预措施如何应用于人身上仍是巨大的挑战[3]。因此，我们需要有替代方法来量化衰老的进程以及反应衰老相关的各种生物学变化，同时对衰老的干预措施表现出足够的敏感性，而这种替代我们称之为——衰老的生物标志物。

早在上世纪60年代，人们便认识到需要生物标志物来量化衰老的进程以及预测其对干预措施的反应，自那时起，人们便开始致力于探索构建明确的衰老生物标志物检测组。进入21世纪以来，随着各类组学技术以及检测手段的发展，使得衰老生物标志物的可选择范围大大增加[4] [5]。最近，在中国衰老标志物研究联合体发布的综述中系统总结了衰老标志物研究在细胞衰老、器官衰老、衰老时钟及其应用、相应伦理及社会意义四个方面的重要进展。并首次提出了衰老标志物的三种“原色”(Primary Colors：系统性、特异性和可用性)，定义了衰老标志物的六个“支柱”(Pillars：生理学特征、影像学特征、组织学特征、细胞改变、分子改变和体液分泌因子)，并指出“生理行为特征”、“影像学特征”和“体液分泌因子”可作为衰老标志物临床转化的三个可应用指标[6]。同年，衰老生物标志物联盟发表的综述也为衰老生物标志物的研究、验证和转化确立范式[7]。基于现有的研究，本综述概括了细胞、器官等各个层面的生物标志物，以及介绍如何评估与验证这些生物标志物并将其应用于衰老的临床研究中去，希望可以为衰老领域的研究者提供参考。

2. 细胞衰老的生物标志物

细胞作为器官和机体的基础组成部分，细胞衰老是器官和机体衰老的原动力，细胞衰老通常描述的是细胞为响应应激或损伤而进入稳定细胞周期停滞，从而触发多种细胞内表型变化。细胞衰老的生物标志物可以展现生物体衰老过程中细胞层面的变化，拓宽了我们对衰老基本机制的了解，并可能成为干预衰老的潜在目标。然而，如何识别、分离出衰老细胞仍是一个巨大的挑战，目前被提出来的标志物仍缺乏特异性，单个标志物很难定义衰老的状态，我们通常需要多个角度的标志物来识别衰老细胞。因此，我们提出10个目前已知的细胞衰老标志物：细胞周期停滞、衰老相关分泌表型(SASP)、表观遗传改变、DNA损伤反应、端粒损耗、细胞周期阻滞、线粒体及代谢功能障碍、蛋白质稳态丧失、异常信号通路、细胞表面标志物。接下来将逐一展开介绍。

2.1. 细胞周期停滞

细胞周期停滞是细胞衰老最显著的核心表现之一，表现为细胞丧失了增殖能力，无法响应正常的刺激进入有丝分裂，除非通过某些干预手段恢复其增殖能力，否则这种停滞通常是不可逆的。细胞衰老中的细胞周期停滞主要受p53/p21CIP1和p16INK4a/RB通路调控[8] [9]，衰老细胞中肿瘤抑制基因p53的激活进而刺激了处于下游的p21CIP1，其可以通过抑制周期素依赖性激酶(CDK)活性阻断视网膜细胞瘤抑制蛋白(RB)的低磷酸化，从而抑制E2F的转录因子，下调增殖标志物MKI67，最终阻断细胞周期的进程[10]。同样地，p16INK4a的激活也可以直接介导磷酸化RB的抑制过程来使细胞周期停滞。但是值得注意的是，p16INK4a被发现在某些非衰老细胞中表达[11]，甚至并非在所有衰老细胞中表达。这也提示了研究细胞周期停滞需要多种生物标志物协同评估。

2.2. 衰老相关分泌表型(SASP)

衰老相关分泌表型(SASP)是指衰老细胞在进入衰老状态后分泌的一系列生物活性分子，其中涉及的分子包括细胞因子(IL-6、IL-1α、IL-8及TNF-α)、生长因子(HGF、TGF-β)、趋化因子(CXCL1、CXCL3，CXCL8)、基质金属蛋白酶(MMPs)以及其他生物活性分子等，同时最近的研究认为小的胞外囊泡(sEVs)及其miRNA也可作为SASP的新成员，其提出被称为“EV-SASP”[12] [13]，它们以类似于激素或细胞因子的方式，参与细胞间通讯，并维持衰老细胞的抗凋亡活性。由于SASP是高度复杂混合物组成，其确切成分随细胞和组织环境以及诱导衰老的刺激而显著不同。这些分子不仅改变了衰老细胞自身的行为，还对周围组织和细胞产生了广泛的影响。SASP的分泌可以导致机体慢性低度炎症，并可以反作用于衰老细胞及其邻近细胞来加速它们的衰老进程，目前已经有研究发现SASP可介导旁分泌衰老[14]。

2.3. 表观遗传改变

表观遗传改变是指在不改变DNA序列的情况下，通过化学修饰(如DNA甲基化、组蛋白修饰等)改变基因的可表达状态，从而调控基因表达的过程[15]。

DNA甲基化改变是最具有代表性的表观遗传生物标志物之一，当启动子内的CpG岛甲基化时，会导致相应的基因沉默，即表达被抑制。有研究发现随着年龄增加，DNA甲基转移酶1 (DNMT1)水平逐渐降低，这或许能解释为什么在多种衰老的生物体中观察到DNA甲基化的整体水平降低[16]。而基于DNA甲基化模式，研究者开发出了最早的表观遗传时钟——DNAmAge，它能够估测大多数细胞和组织的年龄，并预测衰老的结果，包括死亡风险和与年龄相关的疾病[17] [18]。此后随着技术的进步，不断有新的具有更高准确度和精度的表观遗传时钟应用于衰老的研究之中。

组蛋白的多种翻译后修饰，如甲基化、乙酰化、磷酸化等，可以在不改变DNA序列的情况下调控基因的表达，影响细胞的功能和状态，包括细胞的衰老过程。例如秀丽隐杆线虫中缺乏H3K4me3 (指组蛋白第3亚基H3第4位赖氨酸的三甲基化修饰)甲基转氨酶的蠕虫寿命延长[19]，以及H3K4me3在阿尔茨海默病(AD)小鼠模型中会随着年龄的增长而增加[20]。

异染色质是一种高度保守且结构独特的真核染色质，它可以将DNA包裹进一个难以接近、转录失活的结构中，确保基因沉默和基因组的稳定性。根据导致基因沉默的修饰以及功能的差异，异染色质通常分为结构性和兼性两种[21]，值得注意的是，在不同的细胞模型中，衰老相关的异染色质丢失通常伴随着组蛋白甲基转移酶的异常表达，如SET结构域分叉的组蛋白赖氨酸甲基转移酶1 (SETDB1)的下调以及组蛋白赖氨酸去甲基酶4A (KDM4A)或KDM4B的上调，此外，操纵这些酶的表达或活性可以逆转或加速衰老[22] [23]。所以，我们需要结合不同层面的表观遗传生物标志物，才能更好地评估临床衰老干预的手段。

2.4. DNA损伤与修复

当DNA损伤逐渐累积时，细胞会激活DNA的损伤反应(DDR)。DDR通过激活共济失调毛细血管扩张症突变激酶(ATM)介导和共济失调毛细血管扩张症基因Rad3相关激酶(ATR)介导的p53来激活CDKN1A以阻止细胞周期进程，从而协调参与细胞衰老[24]。DNA修复受阻也是衰老细胞中DNA损伤累积的原因之一，有研究发现γH2AX会在DNA双链断裂(DSB)位点形成焦点，招募检查点因子和DNA修复因子，包括TP53BP1、MDC1、NBS1和磷酸化的SMC1，形成持久的DNA损伤灶，导致DNA修复机制的功能障碍[25]。除了DDR外，通过测量8-羟基-2'-脱氧鸟苷(8-OHdG)可以发现，DNA氧化损伤水平也随着年龄增长显著增加，且负责修复DNA氧化损伤的碱基切除修复(BER)能力随着年龄增长而下降[26]。

2.5. 端粒损耗

端粒是真核生物染色体末端的帽状结构，在保护染色体末端DNA中起关键作用。端粒被一种称为shelterin的特征性多蛋白复合物结合，shelterin复合物包含6种蛋白质——端粒重复结合因子1 (TRF1)、端粒重复结合因子2 (TRF2)、TPP1 (负责募集端粒酶)、POT1、TRF1相互作用核因子2 (TIN2)、TRF2相互作用蛋白(RAP1/TERF2IP)，其主要功能是防止DNA修复蛋白进入端粒。端粒DNA长度(TL)可被视为细胞分裂次数的计数器，当端粒缩短导致极短的TL (Hayflick极限)时，会触发不可逆的细胞周期停滞，称为复制衰老。因此，TL可以被认为是衡量衰老的生物标志物。除此之外，近年的研究发现，一种含有端粒重复序列的非编码RNA (Telomeric Repeat-Containing RNA, TERRA)也参与了端粒维持机制。在体内和体外的数据中均发现了端粒长度和TERRA的负相关[27] [28]。端粒酶是唯一一种可以延长端粒的酶，通常在端粒酶肿瘤细胞中可见，因此它作为诊断/预后的肿瘤标志物而发展，但由于端粒酶在正常体细胞中无活性，其在正常衰老细胞中的作用尚未得到深入研究。

2.6. 线粒体功能障碍

线粒体作为重要的细胞内细胞器，承担了能量供应、钙稳态等功能，线粒体功能障碍的许多驱动因素也会导致细胞衰老，例如线粒体功能失调导致活性氧(ROS)生成增加，从而导致衰老和稳定细胞周期停滞[29]。线粒体本身基因组，称为线粒体DNA (mtDNA)，在能量需求旺盛的组织(包括心脏、肝脏和皮肤组织)中，过度mtDNA突变积累会通过损害氧化磷酸化和加速衰老表型，导致线粒体功能障碍[30]。同时衰老细胞中的部分线粒体表现出线粒体外膜通透性，mtDNA由此释放到细胞质中，从而促进SASP [31]。

2.7. 蛋白质稳态丧失

蛋白质稳态网络包含超过1400种不同的蛋白质，为了维护蛋白质稳态，由分子伴侣、自噬–溶酶体系统、泛素–蛋白酶体系统的活动，以及URPER和UPRmt的功能等共同参与[32]，它们都可以作为衰老的生物学标志物。翻译后蛋白质修饰(PTM)通过调节蛋白质活性、定位或与其他细胞分子的相互作用，在衰老过程中起到关键调节能力；这些PTM主要是磷酸化、泛素化、SUMO化、乙酰化、羰基化和氧化翻译后修饰(OxiPTM)。例如帕金森病(PD)和其他突触核蛋白病有关的关键蛋白——α-突触核蛋白，其丝氨酸129位点(pS129)的磷酸化是PD的病理标志[33]。除此之外，氧化还原应激反应能力(RRC)也成为调节衰老中蛋白质稳态的另一个重要因素，RRC可以影响细胞内维持适当活性氧的能力，而适当的活性氧可以激活细胞信号通路，维持氧化还原稳态，降解受损蛋白质，即维持蛋白质稳态[34]。

2.8. 异常信号通路

目前的研究表明，尽管许多刺激可以触发细胞衰老，但它们主要集中在p53途径和pRb途径这两个主要通路上[35]。然而，基因表达谱揭示了复制衰老反应的特征是高度细胞类型特异性，这表明存在多种途径可以诱导衰老反应[36]。其中TNFα信号与衰老密切相关，作为一种多效性促炎细胞因子，TNFα可以介导广泛生物学功能，如刺激正常细胞增殖、对肿瘤细胞发挥细胞溶解活性、引起炎症和免疫调节作用等[37]。TNFα的生物学效应由两种不同的细胞表面受体TNFR1和TNFR2介导，TNFR1包含一个死亡域(DD)，在与TNFα结合后，TNFR1发生三聚化并诱导受体DD结合，随后募集两种含DD的蛋白质，形成一个瞬时膜信号复合体，称为TNFR1信号复合体(TNF-RSC)或复合体I [38]。通过后续信号通路转导，促进NF-κB通路激活[39]，激活后的NF-κB复合物易位到细胞核中促进特定靶基因组的表达。其中NF-κB复合物的p65亚基更显著地富集在衰老成纤维细胞的染色质中[40]。同时，许多TNF-RSC成分也参与衰老过程，例如限制NF-κB信号传导的泛素编辑酶A20，在TNFα诱导的衰老中发挥重要作用，上调A20可预防多种炎症性疾病发生。这些都表明了NF-κB通路在衰老过程中发挥作用[41]。除了NF-κB通路，TNFα信号转导还介导了MAPK通路的激活，其底物MK2参与SASP的翻译，将MAPK通路与mTOR通路联系起来，而mTOR通路在衰老细胞中也被激活[42]。此外，最近的几项研究都表明cGAS-STING通路在促进细胞衰老方面具有重要作用[43]-[45]，cGAS通过产生一系列细胞因子和趋化因子(例如IFN-β、IL-1β、IL-6和IL-8)，反馈到分泌细胞以加强衰老信号。鉴于cGAS-STING通路提供了维持细胞衰老所必需的关键旁分泌信号，该通路的激活也可能作为代表细胞衰老的生物标志物。

2.9. 核内小体紊乱

核内小体(核体)是真核细胞核内的大分子凝聚物，由于没有脂质膜，核体也被认为是具有细胞核的无膜细胞器(MLO) [46]。迄今为止，至少有18种核体被记录，包括核仁、Cajal核体、早幼粒细胞白血病(PML)核体等[47]。核体常呈圆形或点状形态，偶为不规则的形状，例如小颗粒或扭曲的球体[48] [49]。随着衰老的进程，核仁大小一般与动物的寿命成反比，如老年健康人的核仁会扩大，这表明核仁大小是衰老的生物标志物[50]。不同细胞类型和特定压力条件下每种核体的数量差异很大，例如，人成纤维细胞WI38细胞中致癌基因RasV12的过表达使PML核体数量和大小均增加[51]。这表明细胞中某些核体的数量可能是细胞衰老的理想生物标志物。PML核体参与泛素介导的蛋白水解系统运作，其功能障碍导致急性早幼粒细胞白血病、神经退行性疾病和抗病毒功能缺陷[52]；更多与病理性衰老相关的核体表型仍需进一步研究。

3. 器官衰老的生物标志物

器官作为细胞的更上层结构，相比于细胞拥有更复杂的结构组成及生理功能。器官衰老的研究必须注意区分衰老细胞和正常细胞，由于已有充足的证据表明非衰老细胞中存在衰老标志物。例如，巨噬细胞M2表型的极化可以诱导CDKN2A (也称为p16INK4a)和衰老相关的β-半乳糖苷酶(SA-β-gal) [53]。而且目前报道的细胞衰老相关标志物多数是通过细胞培养研究的，因此，单独的细胞衰老标志物不能识别器官中衰老细胞的特异性和敏感性，所以描述器官衰老的生物标志物我们需要做到多管齐下。同时不同于微观层面的细胞衰老，器官衰老通常伴随着一些表观变化，如临床功能、影像学等变化，这些变化也可以作为标准物来衡量器官的衰老，合格的器官衰老生物标志物应该是特异性的、系统性的、可用的。以下我们将着重介绍大脑、心脏、血管衰老的生物标志物。

3.1. 脑衰老

大脑作为人体最高指挥中心，也是容易衰老的器官，衰老的过程会导致一系列神经退行性疾病的发生，在此过程中，大脑所出现的一系列分子、细胞、功能及结构等变化可以作为生物标志物来反映和评价脑老化过程。

脑衰老过程中，表观遗传的改变也参与了脑细胞的衰老，例如在老年小鼠的大脑皮层和海马中，H3K9me2、H3K9me3和H3K27me3的抑制性组蛋白标记增加，H3K36me3和H3K27ac的激活性组蛋白标记减少[54]。蛋白质组学的发展也让蛋白质组生物标志物预测脑衰老成为可能，有研究发现SYT12、GLUR2、FIS1、DRP1、PRDX6、GSTP1、GSTM1、RPL4、RPS3等可以通过减少ATP含量、增加DNA氧化损伤和降低突触功能，导致脑功能衰退[55]。此外，有研究发现血浆促卵泡激素(FSH)、胰岛素生长因子1 (IGF-1)、NAD⁺或NAD⁺/NADH等与整体衰老显著相关[56] [57]，这也代表着非脑细胞特异性标志物或许可以考虑作为脑衰老候选标志物。

血浆、尿液和脑脊液等体液中的成分，由于其非侵入性或微创性、高敏感性以及易于准确测量的特点，成为评估脑衰老不可或缺的生物标志物。Tau蛋白是一种微管相关蛋白，主要分布在神经元轴突，在衰老过程中，过度磷酸化的Tau蛋白(p-Tau)聚集形成神经纤维缠结。研究发现，血浆中的p-Tau与总Tau (t-Tau)水平都与年龄呈正相关，其升高与较低的认知水平和较快的认知下降速度相关[58]。一项纵向随访队列研究显示，血浆t-Tau水平的升高与基底前脑胆碱能系统的萎缩呈正相关，可以预测发生AD的风险[59]。因此，血浆t-Tau和p-Tau水平可以作为预测脑衰老的生物学标志物。神经丝蛋白轻链(NfL)是大脑衰老和长寿的潜在生物标志物，它被发现在血液中的含量随年龄增长呈非线性增加，并且可预测认知能力下降[60]。此外，衰老可以诱发小胶质细胞的异常激活，髓系细胞2上表达的触发受体(TREM2)的细胞外结构域可裂解成为可溶性TREM2 (sTREM2)并释放到脑脊液，随后进入血液，因此可视为小胶质细胞活性的指标，同时有研究发现，脑脊液和血浆sTREM2水平与年龄呈正相关，且与脑脊液中t-Tau、p-Tau水平显著相关，并证实其可以预测轻度认知障碍(MCI)发展为AD的风险[61] [62]。星形胶质细胞中，胶质纤维酸性蛋白(GFAP)作为星形胶质细胞重新激活的生物标志，可用于创伤性脑损伤、中枢神经脱髓鞘疾病和神经退行性疾病的评估和鉴别[63]。有荟萃分析显示，随着年龄的增加，突触传递功能下降和血浆GFAP的升高最为显著[64]，这也表示血浆GFAP水平可以考虑作为评估脑衰老的体液标志物。

大脑功能包括认知功能、运动协调、感知觉和情感等方面，不同脑功能在脑衰老过程中的变化不一致，这或许可以作为潜在的生物标志物来预测大脑的衰老。情景记忆作为认知功能指标被发现在衰老过程中持续下降，且与内侧颞叶和后扣带回的萎缩程度显著相关[65]。一项纳入3000余名受试者的研究显示，精细运动能力在衰老过程中显著下降，且与大脑灰质体积的减少显著相关[66]。至于基于MRI影像学的多种结构成像标志物，包括脑萎缩、微血管改变、微出血、白质病变(WML)和白质完整性受损，可以预测脑老化和神经退行性疾病[67]。通过正电子发射断层扫描(PET)可以发现分子影像标志物，如18F-氟脱氧葡萄糖(FDG)可以测量脑的葡萄糖代谢，正常老化过程中，18F-FDG摄取量减少主要出现在额叶、扣带回和颞叶，这表明这些脑区容易受到衰老的影响[68] [69]。

综上所述，脑衰老所带来的一系列包括AD和PD在内的各种神经退行性疾病，会对家庭和社会带来了巨大负担，所以通过干预脑衰老来预防或推迟疾病发生是很有必要的。同时，上述的研究发现分子、细胞层面的生物学变化可以在体液、功能、影像学等表观层面变现出来，为后续开展大规模纵向研究提供帮助。

3.2. 心脏衰老

衰老被认为是心血管疾病(CVD)的独立危险因素，如何预防和管理心脏衰老带来的心血管疾病是目前全国乃至全世界急需解决的问题。

多项研究表明，在衰老影响下，各种心血管细胞谱系(如心肌细胞、心脏间充质基质细胞、心脏成纤维细胞等)中都发生衰老相关标记物的积累。研究发现，衰老小鼠的心肌细胞出现了以下衰老相关标志物：TAF、周期蛋白依赖性激酶抑制剂(CDKN1a、CDKN2B (也称为p15INK4b)和CDKN2a)、活化的SA-β-gal、衰老相关卫星扩张(SADS)和促纤维化相关SASP的累积[70]；衰老的血管内皮细胞可发生内皮–间质转化(EndoMT)和纤维化，这个过程受到TGF-β、内皮素-1 (EDN1)和IL-1等细胞因子的调节[71]。由于心肌细胞对能量需求大，线粒体功能障碍可加速心脏衰老。衰老心脏中ROS的积累，会导致线粒体蛋白羰基化程度升高，同时线粒体DNA突变和缺失增加，这也表明衰老加剧了心脏中线粒体氧化损伤[72]。同时单核转录组测序技术的发展也帮助我们发现IL-7在心脏老化过程中增加及确定FOXP1和FOXP2是关键的年龄下调转录调节因子[73] [74]。

心脏衰老产生的分泌因子可在血液和尿液中检测到，如血清B型钠尿肽(BNP)，研究发现与年龄相关的左心房应变损害与更高的BNP水平正相关，预示着其可以作为心脏衰老和心功能下降的体液生物标志物[75]。心肌酶、超敏肌钙蛋白T、肌红蛋白等作为心脏损伤的重要血液指标，有研究报道超敏肌钙蛋白T的水平也随着年龄增长而增加，并且男性往往高于女性[76]，但仍需要进一步研究以确定它们能否作为潜在的心脏衰老标志物。

心脏衰老带来的功能减退，诸如泵血功能降低(收缩和舒张功能减退)、窦房结起搏和电传导功能障碍、神经内分泌功能异常(血管紧张素II (Angiotensin II, Ang II)、内皮素(Endothelin, EDN)和去甲肾上腺素分泌增加)等都可以较为准确地反映心脏的衰老状况[77]，是心脏衰老的潜在标志物，并且在临床上可以通过超声心动图、心脏MR、PET等影像学检查完成评估。

总之，我们总结了心脏衰老的相关生物标志物，针对这些衰老生物标志物所开发的干预策略已经逐步在动物模型中开展，并促进临床应用和转化。

3.3. 血管衰老

血管作为人体器官的重要组成成分，血管衰老是引起人体各器官系统衰老的重要生理病理基础，是老年人多种慢性病共同的发病机制。其主要表现为血管随增龄而发生形态和功能变化的过程，包括血管僵硬度增加、内中膜厚度增厚、内皮功能障碍、血管新生能力降低，炎症因子分泌增加、胶原纤维沉积增加等[78]。

衰老过程中，诸多血管的组成细胞会发生形态学改变和功能适应。例如衰老的血管内皮细胞(VECs)和血管平滑肌细胞(VSMCs)表现出增殖能力降低，细胞形态变得扁平和增大[79]，并表现出细胞群中多倍体增加[80]，以及诸如细胞周期抑制剂(CDKN2a、CDKN1a和Trp53)、DNA损伤病灶和SASP因子在老年小鼠的主动脉中上调[81]-[83]。同时，在细胞衰老过程中，VECs和VSMCs中观察到p53/p21CIP1和p16INK4a/RB通路上调、端粒损耗和SA-β-gal激活[11] [84] [85]，同时由NF-κB通路介导的炎症也与血管老化相关，NF-κB激活上调炎症细胞因子和细胞粘附分子表达，包括IL-1β、TNFα、IL-6、VCAM-1、ICAM-1、iNOS、MCP-1和COX-2 [85]。

血管衰老变现出的血管僵硬度增加、内皮功能障碍等可以通过测量颈股动脉脉搏波速度(PWV)、流量介导的扩张(FMD)技术、反应性充血指数(RHI)量化，并作为潜在生物标志物反应衰老过程中血管功能的变化。此外还可以通过影像学手段测量颈动脉内膜中层厚度(cIMT)、冠状动脉钙化积分(CACS)等，这些指标与时序年龄高度相关，并且是冠心病和所有动脉粥样硬化相关CVD的重要预测因子[78]。在胸主动脉瘤和腹主动脉瘤的人和小鼠模型中也发现到衰老相关标志物，包括CDKN1A、p53、与端粒相关的总γH2AX和γH2AX (TAF)以及SASP因子[86] [87]，这预示着其和血管衰老之间的潜在联系。

4. 衰老时钟

现代组学技术的发展，也让衰老生物标志物的研究中有了更多的选择，而基于各种建模技术，尤其是人工智能技术所构建的被称为“衰老时钟”的预测模型，能帮助选择最合适的生物标志物组合来量化不同层级的衰老程度，预测个体生物年龄及衰老速度。以下我们将根据这些模型中使用的生物标志物性质，分类介绍老化时钟及其应用。

4.1. 表观遗传时钟

衰老是一个伴随着表观遗传变化不断积累的过程，最终导致细胞、组织和器官的退化。因此通过测量表观遗传变化的水平来预测生理年龄成为可能，这种方法也被称为“表观遗传时钟”。随着年龄增长，基因组中甲基化位点会发生变化。基于这一机制，2013年，Horvath [88]开发了第一个表观遗传衰老时钟，共发现353个CpG位点与衰老密切相关。Horvath时钟可以分析整个基因组的甲基化标记，从而显示出衰老过程中不同组织老化速度。基于全血样本构建的Hannum时钟[17]，发现了71个与年龄相关的CpG位点，尽管样本范围相对窄，但在预测成人血液样本年龄时有着更高的准确性。尽管Horvath时钟与Hannum时钟可以很好地反应生物的时序年龄，但无法准确地反应生物年龄，因此在前代变化遗传时钟基础上开发的DNAm PhenoAge时钟[89]通过整合血压、血脂等10个临床特征，能更全面地给个体生理状态“画像”，在对全因死亡、癌症和阿尔茨海默症等预测方面较Horvath时钟、Hannum时钟具有更好的表现，以及在预测10年和20年死亡率方面表现更出色。Lu等人[90]通过结合吸烟和年龄相关的血清蛋白水平的影响开发了GrimAge，可有效预测死亡风险和多种年龄相关疾病。毫无疑问，DNA甲基化与衰老之间存在很强的相关性，那或许通过操纵一些关键的DNA甲基化时钟相关基因可以影响衰老过程，例如研究发现上调ELVOL2可恢复线粒体功能并减轻与年龄相关的黄斑变性[91]。因此DNA甲基化是表观遗传时钟的一个重要组成，不仅可以作为衰老过程的标志，也可以直接调节衰老过程。

4.2. 转录组时钟

基于RNA转录组数据构建的转录组时钟，相比其他生物标志物拥有更强的组织特异性，并且可以提供更详细的关于个人健康状况的信息。Peters等人[92]对7个大型队列研究中的外周血单核细胞基因表达阵列数据进行线性回归得到一个模型，可以用实际年龄的拟合值来衡量生理年龄，MAE为7.8岁。Fleischer等[93]基于人真皮成纤维细胞RNA-seq数据导出转录组时钟，拟合实际年龄的MAE为4.0岁。但同样地，过高的组织特异性意味着开发一个在不同组织和人群中都准确的转录组时钟将需要更多的研究和验证。近来，发现简单二值化和相对年龄缩放定义基因集可以对数据进行去噪并改善年龄预测效果。同时scRNA-seq技术的发展使得能够在单个细胞水平上表征转录组数据，并为构建衰老时钟提供了一种新方法。

4.3. 蛋白组时钟

由于蛋白质可以直接调节与年龄相关的健康状态和疾病，以及蛋白质组学测量技术的发展也带动了蛋白组时钟的研究。Tanaka等人构建了一种基于与时序年龄高度相关的循环血浆蛋白的老化时钟[94]，最终鉴定出76种蛋白质的蛋白质组学特征，具有良好的年龄预测能力，其中GDF15表现出最强的年龄关联。尽管血浆蛋白质组学在发现衰老生物标志物方面有许多理论优势，但仍有局限性。首先，便是基于不同蛋白质平台的数据存在差异，如基于质谱(MS)可以定量整个蛋白组并精确识别蛋白质的翻译后修饰，但对于低丰度蛋白质的检测灵敏度不高。其次，需要构建多中心研究来用于验证模型，以避免任何基于性别或种族的差异，以及个体间或个体内的差异。最后，需要考虑蛋白质组与来自其他组学层面的各种特征的整合，通过多组学联合探索生物标志物能更大程度地揭示与衰老相关的改变。

5. 讨论

以上我们介绍了细胞、器官层面的衰老生物标志物及衰老时钟的研究进展，其实随着衰老研究的深入，我们认识到衰老并不单单局限于细胞、器官或者组织，还体现在生物个体甚至种群水平上。衰老标志物的探索需要多元化的进行，尽管不断有新的生物标志物被报道出来，但是这些标志物是否能满足特异性、系统性、可用性等要求仍待验证，同时衰老的复杂性注定不能用单个生物标志物来衡量，如何利用衰老的生物标志物构建完善的生物模型来预测或干预衰老以及转化为临床应用仍是巨大的挑战。对于衰老生物标志物的临床转化问题，Vadim N. Gladyshev等人[95]总结了如下6大核心挑战：1) 数据共享壁垒；2) 衰老标志物评估标准；3) 衰老标志物应用年龄范围；4) 临床使用和实施的最低标准制定；5) 衰老标志物在医疗环境中的定位；6) 衰老标志物与医疗保健和预防医学相连接。并逐一给出建议指导实现衰老生物标志物的临床转化。同时随着人们对衰老的关注和投入增加，越来越多的临床队列尤其是大基数队列的建立，以及各种组学、计算机、人工智能技术等的发展，衰老生物标志物的发掘和验证以及应用模型的构建会稳步深入，我们会进一步揭示衰老的奥秘，以提升人类生活质量，最终实现延缓衰老的愿景。

基金项目

本项工作得到了中国医学科学院中央级公益性科研院所基本科研业务费健康长寿(青年奖掖项目：2019-RC-HL-026)的支持。

NOTES

^*通讯作者。

参考文献